Limosilactobacillus fermentum
Sommaire
  1. La souche en bref
  2. Mécanisme d’action
  3. Composition et production
  4. Aperçu de la recherche
  5. Publications
  6. Contact

DSM 14241

Limosilactobacillus fermentum ME-3®

Une souche probiotique d’origine humaine dotée d’un système glutathion complet

Informations scientifiques sur la souche ME-3® destinées aux formulateurs et aux professionnels de la R&D, de la qualité et des affaires réglementaires : identité, mécanisme d’action, production et recherche publiée.

Poudre pâle de culture lyophilisée sur une surface en verre sombre, gros plan en lumière latérale douce
Publications
25
Études cliniques chez l’humain
13
Université de Tartu, Estonie
Origine humaine

Identité

La souche en bref

Espèce
Limosilactobacillus fermentum (anciennement Lactobacillus fermentum ; genre reclassé en 2020)
Souche
ME-3, déposée à la collection de cultures DSMZ sous le numéro DSM 14241
Origine
isolée en 1995 à l’Université de Tartu, en Estonie, à partir du microbiote intestinal d’un enfant d’un an en bonne santé
Sécurité
L. fermentum figure sur la liste de l’EFSA des micro-organismes bénéficiant d’une présomption d’innocuité reconnue (QPS). Aucune résistance transférable aux antibiotiques n’a été identifiée
Statut réglementaire UE
ME-3 n’est pas un nouvel aliment (déclaration de VF Bioscience disponible sur demande)
Propriété intellectuelle
souche brevetée ; brevet américain 9,974,817 ; brevet européen EP2943210B1 ; brevet japonais 6484561
Qualités
10 × 109 UFC/g pour les applications alimentaires ; 100 × 109 UFC/g pour les compléments alimentaires ; qualité tyndallisée disponible sur demande
Stabilité
24 mois à température ambiante dans les produits finis en gélules
Recherche
plus de 20 publications depuis 2003, dont des essais contrôlés randomisés chez l’humain

Mécanisme

Mécanisme d’action

Cellules bactériennes en bâtonnet d’un bleu lumineux sur fond sombre, avec un petit modèle moléculaire à l’arrière-plan

Un système glutathion complet.

ME-3 est l’une des rares souches probiotiques chez lesquelles un système glutathion complet a été décrit : la souche synthétise le glutathion, le capte dans son environnement et le recycle grâce à l’activité de la glutathion peroxydase et de la glutathion réductase (Kullisaar 2010, in vitro). La souche exprime également une superoxyde dismutase à manganèse. Dans une étude de criblage portant sur plus de 200 souches de lactobacilles et de bifidobactéries, ME-3 a montré l’activité antioxydante la plus élevée (Mikelsaar 2009, in vitro).

Marqueurs antioxydants chez l’humain.

Dans les études chez l’humain, la prise de ME-3 a été associée à des modifications des marqueurs sanguins du statut antioxydant : activité et statut antioxydants totaux (TAA, TAS), rapport redox du glutathion, LDL oxydées et activité paraoxonase (Kullisaar 2003 ; Songisepp 2005 ; Kullisaar 2011). Après 14 jours de consommation de kéfir fermenté avec ME-3, le signal sérique correspondant au glutathion a augmenté dans une étude non contrôlée (Rehema 2015).

Activité antimicrobienne.

ME-3 produit des acides organiques et a montré in vitro une activité élevée contre des souches de Salmonella, Shigella sonnei et Helicobacter pylori (Hütt 2006 ; Mikelsaar 2008).

Survie dans le tube digestif.

ME-3 tolère l’acidité gastrique et la bile et adhère à la muqueuse intestinale (Mikelsaar 2009).

Barrière intestinale.

Dans un modèle de cellules épithéliales intestinales, ME-3 a empêché l’augmentation de la perméabilité paracellulaire provoquée par l’irinotécan ou par le lipopolysaccharide bactérien et a préservé les protéines des jonctions serrées (De Gregorio 2023, in vitro).

Production

Composition et production

ME-3 est produite par fermentation contrôlée et lyophilisation, et fournie sous forme de poudre standardisée en nombre de cellules viables, avec de la maltodextrine comme support. Deux concentrations sont disponibles : 10 × 109 UFC/g pour les applications alimentaires et 100 × 109 UFC/g pour les compléments alimentaires. Une qualité tyndallisée est disponible sur demande. ME-3 est fabriquée sur un site certifié FSSC 22000.

Stabilité.

Dans les produits finis en gélules, ME-3 est stable pendant 24 mois à température ambiante. Conditions de stockage et durée de conservation de la poudre : voir la fiche technique.

ME-3 a été utilisée dans des gélules, des sachets de poudre et des produits laitiers fermentés (kéfir, yaourt, lait de chèvre fermenté). Dans les études chez l’humain, les apports quotidiens allaient d’environ 109 UFC (études en gélules) à 4 × 1010 UFC (études avec du kéfir). La dose recommandée pour les produits en gélules est de 6 à 8 × 109 UFC/jour. Fiche technique, certificat d’analyse et déclarations réglementaires sur demande.

Bioréacteur en acier inoxydable dans une salle blanche, avec un hublot dans le couvercle, des vannes et des conduites

Recherche

Aperçu de la recherche

Les études sont regroupées par thème. Le type de preuve est indiqué pour chacune : humain, animal ou in vitro. Les références complètes figurent sous Publications.

Statut antioxydant

  • Humain

Des études contrôlées chez des adultes en bonne santé ont observé une activité antioxydante totale plus élevée et des marqueurs d’oxydation des lipides et des lipoprotéines plus bas après 3 semaines de prise de ME-3, sous forme de lait de chèvre fermenté ou de gélules (Kullisaar 2003 ; Songisepp 2005). Des modifications comparables de ces marqueurs ont été mesurées dans la peau et le sang dans une étude contrôlée chez des adultes atteints de dermatite atopique légère à modérée (Kaur 2008), ainsi que lors de la prise d’un symbiotique multisouche contenant ME-3 chez des adultes colonisés par H. pylori (Hütt 2009).

Lipides sanguins et oxydation des lipoprotéines

  • Humain

Dans un essai contrôlé randomisé contre placebo chez 100 adultes en bonne santé, le kéfir avec ME-3 a réduit les LDL oxydées postprandiales, les triglycérides et les 8-isoprostanes urinaires (Kullisaar 2011). Dans un essai contrôlé randomisé chez 164 adultes présentant un cholestérol LDL et/ou des triglycérides à la limite supérieure de la normale, 8 semaines de kéfir avec ME-3 (8 × 109 UFC/jour) ont réduit le cholestérol LDL de 5 %, les LDL oxydées de 6 % et les triglycérides de 17 %, avec des différences significatives par rapport au groupe témoin (Mikelsaar 2015).

Produit combiné

Les études menées avec Reg'Activ Cholesterol, une formule associant ME-3 à d’autres ingrédients, rapportent des améliorations des marqueurs lipidiques, des LDL oxydées et de l’HbA1c (Kullisaar 2016 ; Rehema 2019 ; Kullisaar 2019).

Microbiote intestinal

  • Humain

Dans une étude pilote en double aveugle contrôlée contre placebo, 8 semaines de kéfir avec ME-3 ont augmenté la richesse et la diversité des lactobacilles intestinaux ainsi que la diversité globale du microbiote (Sepp 2018). Les lactobacilles fécaux totaux ont également augmenté après 3 semaines de prise de ME-3 (Songisepp 2005).

Barrière intestinale et modèles d’infection

  • In vitro
  • Animal

Dans des modèles cellulaires Caco-2, ME-3 a empêché l’altération de la barrière induite par l’irinotécan et le LPS et a réduit la libération de cytokines pro-inflammatoires (De Gregorio 2023). Chez des souris infectées par Salmonella Typhimurium, ME-3 administrée seule a réduit les dommages oxydatifs de la muqueuse intestinale, mais pas l’infection elle-même (Truusalu 2004). Associée à l’antibiotique ofloxacine, elle a amélioré l’élimination de l’agent pathogène et réduit les granulomes hépatiques et spléniques (Truusalu 2008 ; Truusalu 2010).

Glycation et marqueurs métaboliques

  • Animal

Chez des souris diabétiques db/db, 12 semaines de ME-3 ont réduit la prise de poids, amélioré la tolérance au glucose, diminué les produits de glycation dans les reins et les poumons et réduit l’accumulation de graisse dans le foie (Guilbaud 2020).

Verrerie de laboratoire et un portoir à pipettes sur une paillasse sombre, faible profondeur de champ

Preuves

Publications

Études chez l’humain 13

  1. 2003

    Antioxidative probiotic fermented goats' milk decreases oxidative stress-mediated atherogenicity in human subjects

    Kullisaar T, et al. British Journal of Nutrition 90(2):449-456

    Humain, étude pilote contrôlée
    PubMedDOI
  2. 2005

    Evaluation of the functional efficacy of an antioxidative probiotic in healthy volunteers

    Songisepp E, et al. Nutrition Journal 4:22

    Humain, étude ouverte contre placebo + ECR
    PubMedDOIPMC
  3. 2008

    Successful management of mild atopic dermatitis in adults with probiotics and emollients

    Kaur S, et al. Central European Journal of Medicine 3(2):215-220

    Humain, étude pilote contrôlée
    DOI
  4. 2008

    Double benefit claims for anti-microbial and anti-oxidative probiotic

    Mikelsaar M, et al. Microbial Ecology in Health and Disease 20:184-188

    In vitro + ECR croisé chez l’humain (symbiotique)
    DOI
  5. 2009

    Effects of a synbiotic product on blood antioxidative activity in subjects colonized with Helicobacter pylori

    Hütt P, et al. Letters in Applied Microbiology 48(6):797-800

    Humain, ECR croisé (symbiotique)
    PubMedDOI
  6. 2011

    An antioxidant probiotic reduces postprandial lipemia and oxidative stress

    Kullisaar T, et al. Central European Journal of Biology 6(1):32-40

    Humain, ECR
    DOI
  7. 2015

    Regulation of plasma lipid profile by Lactobacillus fermentum (probiotic strain ME-3 DSM14241) in a randomised controlled trial of clinically healthy adults

    Mikelsaar M, et al. BMC Nutrition 1:27

    Humain, ECR
    DOI
  8. 2015

    Proteomic proof that a probiotic elevates glutathione level in human serum

    Rehema A, et al. Open Life Sciences 10

    Humain, étude non contrôlée
    DOI
  9. 2016

    The use of probiotic L. fermentum ME-3 containing Reg'Activ Cholesterol supplement for 4 weeks has a positive influence on blood lipoprotein profiles and inflammatory cytokines: an open-label preliminary study

    Kullisaar T, et al. Nutrition Journal 15(1):93

    Humain, étude pilote en ouvert Produit combiné
    PubMedDOI
  10. 2018

    The effect of Lactobacillus fermentum ME-3 on the intestinal microbiota and urine polyamine content: a double-blind placebo-controlled pilot trial

    Sepp E, et al. Journal of Functional Foods 48:430-438

    Humain, étude pilote en double aveugle contre placebo
    DOI
  11. 2019

    Multi-targeted prevention of cardiovascular disease risk factors with Reg'Activ Cholesterol food supplement

    Rehema A, et al. EC Nutrition 14(11):101-110

    Humain, ECR Produit combiné
  12. 2019

    The Reg'Activ Cholesterol positive effects in asymptomatic volunteers with borderline values of cardio-metabolic risk factors are sustainable in long-term run

    Kullisaar T Research Open - Endocrinology, Diabetes and Metabolism Journal 3(2)

    Humain, suivi à long terme Produit combiné
    DOI
  13. 2021

    Improvement of metabolic syndrome status by risk factors modifications with probiotic

    Kullisaar T, Rehema A Open Journal of Case Reports 2:123

    Humain, rapport de cas Produit combiné

Études chez l’animal 4

  1. 2004

    The influence of antibacterial and antioxidative probiotic lactobacilli on gut mucosa in a mouse model of Salmonella infection

    Truusalu K, et al. Microbial Ecology in Health and Disease 16:180-187

    Animal
    DOI
  2. 2008

    Eradication of Salmonella Typhimurium infection in a murine model of typhoid fever with the combination of probiotic Lactobacillus fermentum ME-3 and ofloxacin

    Truusalu K, et al. BMC Microbiology 8:132

    Animal
    PubMedDOIPMC
  3. 2010

    Immunological, antioxidative, and morphological response in combined treatment of ofloxacin and Lactobacillus fermentum ME-3 probiotic in Salmonella Typhimurium murine model

    Truusalu K, et al. APMIS 118(11):864-872

    Animal
    PubMedDOI
  4. 2020

    The effect of Lactobacillus fermentum ME-3 treatment on glycation and diabetes complications

    Guilbaud A, et al. Molecular Nutrition & Food Research 64

    Animal
    PubMed

Études in vitro 4

  1. 2001

    Characterisation and differentiation of lactobacilli by lectin typing

    Annuk H, et al. Journal of Medical Microbiology 50(12):1069-1074

    In vitro
    PubMedDOI
  2. 2006

    Antagonistic activity of probiotic lactobacilli and bifidobacteria against entero- and uropathogens

    Hütt P, et al. Journal of Applied Microbiology 100(6):1324-1332

    In vitro
    PubMed
  3. 2010

    Complete glutathione system in probiotic Lactobacillus fermentum ME-3

    Kullisaar T, et al. Prikladnaia Biokhimiia i Mikrobiologiia 46(5):527-531 (Applied Biochemistry and Microbiology)

    In vitro, mécanistique
    PubMed
  4. 2023

    Protective effect of Limosilactobacillus fermentum ME-3 against the increase in paracellular permeability induced by chemotherapy or inflammatory conditions in Caco-2 cell models

    De Gregorio A, et al. International Journal of Molecular Sciences 24(7):6225

    In vitro
    PubMedDOIPMC

Revues et contexte 4

  1. 1997

    Intestinal microflora of Estonian and Swedish infants

    Sepp E, et al. Acta Paediatrica 86(9):956-961

    Humain, étude observationnelle (contexte)
    PubMedDOI
  2. 2008

    Probiotics, oxidative stress, inflammation and diseases

    Kullisaar T, et al. Proceedings of the 4th European Congress on Food

    Actes de congrès
  3. 2009

    Lactobacillus fermentum ME-3 - an antimicrobial and antioxidative probiotic

    Mikelsaar M, Zilmer M Microbial Ecology in Health and Disease 21(1):1-27

    Revue (monographie de souche)
    PubMedDOI
  4. 2016

    Biodiversity of intestinal lactic acid bacteria in the healthy population

    Mikelsaar M, et al. Advances in Experimental Medicine and Biology 932:1-64

    Revue
    PubMedDOI

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